補体依存性細胞傷害

抗腫瘍性の治療用抗体を開発するには、標的細胞を殺すためのCDC誘発能力を含む、抗体のエフェクター機能をin vitro で分析する必要がある。古典的なアプローチは、抗体を標的細胞および補体源（血清）と共にインキュベートすることである。その後、いくつかの方法で細胞死を測定する。

放射能法

CDC測定の前に標的細胞を⁵¹Cr（英語版）で標識すると、細胞溶解（細胞死）時にクロムが放出され、その放射能量を測定する^[6][7]。

生細胞の代謝活性の測定（生細胞染色）

標的細胞を抗体や補体とインキュベートした後、細胞膜を透過する色素（カルセイン（英語版）AM^[7][8]やレサズリン^[6][9]など）を添加する。生きている細胞はこれを代謝して、フローサイトメトリーで検出できる不透過性の蛍光生成物を作る。この生成物は、代謝が不活発な死細胞では形成されない。

放出された細胞内酵素の活性測定

死細胞が酵素（LDHやGAPDHなど^[6]）を放出し、その基質を加えると色の変化が起こり、通常は吸光度や蛍光の変化として定量される。

死細胞の染色

（蛍光）色素が死細胞の損傷した細胞膜を通して死細胞内に入り込む。例えば、ヨウ化プロピジウム（英語版）は死細胞のDNAに結合し、フローサイトメトリーで蛍光シグナルが測定出来る^[6]。

CDC検査は、臓器や骨髄の移植に適したドナー、すなわちMHCであるHLAの表現型が一致するドナーを見つけるために行われる^[10]。まず、患者とドナーのHLA表現型を決定するために、HLA型判定が行われる。適合する可能性のあるペアが見つかると、患者が移植片拒絶反応を引き起こす可能性のあるドナー特異的な抗HLA抗体を産生することを排除するために、交差適合試験が行われる。

CDC方式のHLA型（血清型）では、特徴付けられた同種間ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体から成る抗HLA抗体のバッチを使用する。これらの抗体は、患者またはドナーのリンパ球および補体源と1つずつインキュベートされる。死細胞の量（つまり陽性結果）は、死細胞または生細胞の染色によって測定される。最近では、CDC型判定に代わって、PCRによってHLA分子のヌクレオチド配列を特定する分子型判定が行われている^[10]。

CDC法は通常、交差適合試験に用いられる。基本的には、患者の血清をドナーのリンパ球とインキュベートし、ウサギの補体を加えた後に2回目のインキュベートを行う。死細胞の存在（陽性）は、ドナーがこの患者に適していないことを意味する。検査感度を上げるためには、最小培養時間の延長、抗ヒトグロブリン（英語版）（AHG）の添加、補体添加前の未結合抗体の除去、T細胞とB細胞のサブセットの分離などの改良が可能である。CDC交差適合試験以外にも、より感度が高く、補体非活性化抗体も検出できるフローサイトメトリー交差適合試験もある^[11]。

• 抗体依存性細胞傷害（ADCC）